鲑鱼精DNA作为分子杂交、竞争结合和稳定性研究的常用辅助试剂，其纯度、浓度与储存稳定性都会直接决定实验的重复性和信噪比，可从以下三方面理解：
1、纯度
-杂质（蛋白、RNA、寡糖、内毒素）会竞争探针或药物的结合位点，导致背景升高、结合常数被低估。
-电泳或光谱实验中出现“拖尾”、额外吸收峰，往往提示纯度＜95%。
-高纯度（≥95%）的鲑鱼精DNA在紫外-可见扫描中A260/A280≈1.85、A260/A230≥2.0，可满足大多数DNA-药物相互作用、稳定性及探针封闭实验的要求。
2、浓度
-作为封闭剂时，常用终浓度50–200µgmL⁻¹；浓度过低（<20µgmL⁻¹）封闭不充分，膜杂交或FISH会出现非特异斑点；浓度过高（>500µgmL⁻¹）则探针有效浓度被稀释，信号反而下降。
-在DNA-金属/药物相互作用研究中，浓度过低会使结合峰差值过小、Δε值误差大；浓度太高又易产生内滤效应，使紫外差分光谱失真。文献常用1–5×10⁻⁴molL⁻¹（以磷计）作为最佳区间。
-仪器定量线性范围需预先校验：超微量分光光度计对鲑鱼精DNA在5ngµL⁻¹–2000ngµL⁻¹呈理想线性（R²≥0.999），低于5ngµL⁻¹时误差显著增大。
3、稳定性
-溶液状态：4℃存放不宜超过1周，-20℃分装可保存3–6个月；反复冻融>5次会出现剪切降解，表现为粘度下降、A260升高。
-干燥粉末：避光、干燥、-20℃密封可稳定2年以上；受潮或室温放置1个月后，GC区易发生脱嘌呤，热变性温度（Tm）降低2–4℃。
-稳定性下降会直接影响Tm值、圆二色性（CD）信号及与金属/药物的结合常数，导致实验重现性差。
操作建议
1、购入后先测纯度（A260/A280、A260/A230、琼脂糖条带完整性），不满足要求时再用酚-氯仿抽提或树脂柱纯化。
2、按单次用量（如1mgmL⁻¹，50µL/管）分装，-20°C避光保存；使用前65°C加热5min快速退火，可减少聚集。
3、封闭或结合实验前，用0.22µm过滤除菌并测定实际浓度，以消除冻存稀释误差。
只要控制纯度≥95%、工作浓度落在仪器/方法验证过的线性区间，并采用“分装-冷冻-避免反复冻融”原则，鲑鱼精DNA就能在杂交、封闭及相互作用研究中提供稳定、可重复的背景。
