谷胱gan肽还原酶(GR)活性测定试剂盒说明书
微量法 100T/96S
GR 是广泛存在于真核和原核生物中的一种黄素蛋白氧化还原酶,是谷胱gan肽氧化还原循环的关键酶之一(通常昆虫中 GR 被TrxR 取代)。GR 催化NADPH 还原GSSG 生成GSH,有助于维持体内 GSH/GSSG比值。GR 在氧化胁迫反应中对活性氧清除起关键作用,此外GR 还参与抗坏血酸-谷胱gan肽循环途径。
GR 能催化NADPH 还原GSSG 再生GSH,同时NADPH 脱氢生成NADP+;NADPH 在 340 nm 有特征吸收峰,相反NADP+在该波长无吸收峰;通过测定 340 nm 吸光度下降速率来测定 NADPH 脱氢速率,从而计算GR 活性。
产品名称 | BV6008-100T/96S | Storage |
试剂一:液体 | 120ml | 4℃ |
试剂二:粉剂 | 2 支 | -20℃ |
试剂三:粉剂 | 2 支 | -20℃ |
说明书 | 一份 |
试剂二:粉剂×2 支,-20℃保存。临用前加入 1.2ml 蒸馏水,混匀。试剂三:粉剂×2 支,-20℃保存。临用前加入 0.6ml 蒸馏水,混匀。
具体产品的参数以收到产品说明书的参数为准
低温离心机、水浴锅、移液器、紫外分光光度计/酶标仪、微量石英比色皿/96 孔板、和蒸馏水
1. 组织:按照组织质量(g):试剂一体积(ml)为 1:5~10 的比例(建议称取约 0.1g 组织,加入 1ml 试剂一)进行冰浴匀浆。8000g,4℃离心 15min,取上清,置冰上待测。
2. 细菌、真菌:按照细胞数量(104 个):试剂一体积(ml)为 500~1000:1 的比例(建议 500 万细胞加入 1ml 试剂一),冰浴超声波破碎细胞(功率 300w,超声 3 秒,间隔 7 秒,总时间 3min);然后 8000g, 4℃,离心 15min,取上清置于冰上待测。
3. 血清等液体:直接测定。
1. 分光光度计/酶标仪预热 30 min,调节波长到 340 nm,蒸馏水调零。
2. 试剂一置于 25℃(普通物质)或者 37℃(哺乳动物)中预热 30min。
3. 测定管:取微量石英比色皿或 96 孔板,依次加入 10μl 试剂三,20μl 试剂二,150μl 试剂一,20μl 上清液,混匀,于 340nm 迅速测定初始吸光度和 180 s 吸光度,记为 A 测 1 和A 测 2,△A 测定管= A 测 1﹣A测 2。
注意:
1、加完上清液后必须迅速混匀测定,保证准确测出初始反应速度;
2、当出现初始 180s 内吸光值不稳定时,可以适当延长反应时间,选取相对稳定的时间段内吸光值变化值;
3、当所测△A 测定管的值在零点附近徘徊时,可能原因:(1)样本GR 酶活性低,建议浓缩样本后再进行测定;(2)样本GR 酶活性过高,吸光值变化区间过小无法准确测出,建议样本稀释 2~5 倍后再进行测定
a.使用微量石英比色皿测定的计算公式如下
(1). 按蛋白浓度计算
活性单位定义:在一定温度中,pH8.0 条件下,每毫克蛋白每分钟催化 1nmol NADPH 氧化为 1 个酶活单位。
GR 酶活(nmol/min/mg prot)= [ △A 测定管÷ε÷d×V 反总×109]÷[Cpr×V 样]÷T
= 536×△A 测定管÷Cpr
(2). 按样本质量计算
活性单位定义:在一定温度中,pH8.0 条件下,每克样本每分钟催化 1nmol NADPH 氧化为 1 个酶活单位。
GR 酶活(nmol/min/g 鲜重)= [ △A 测定管÷ε÷d×V 反总×109] ÷(W×V 样÷V 样总)÷T
= 536×△A 测定管÷W
(3) 按细胞数量计算
活性单位定义:在一定温度中,pH8.0 条件下,每 104 个细胞每分钟催化 1nmol NADPH 氧化为 1 个酶活单位。
GR 酶活(nmol/min/104 cell)= [ △A 测定管÷ε÷d×V 反总×109] ÷(细胞数量×V 样÷V 样总)÷T
= 536×△A 测定管÷细胞数量
(4)按液体体积计算
活性单位定义:在一定温度中,pH8.0 条件下,每毫升液体每分钟催化 1nmol NADPH 氧化为 1 个酶活单位。
GR 酶活(nmol/min/ml)= [ △A 测定管÷ε÷d×V 反总×109]÷×V 样÷T
= 536×△A 测定管
ε:NADPH 摩尔消光系数 6.22×103L/mol/cm;d:比色皿光径,1 cm;V 反总:反应体系总体积,200μl=2×10-4 L;106:1 mol=1×106μmol; Cpr:上清液蛋白浓度(mg/ml);W :样品质量;V 样:加入反应体系中上清液体积,20μl =2×10-2 ml;V 样总:提取液体积,1 ml;V 样总:提取液体积,1 ml;T:反应时间,3 min。 b.使用 96 孔板测定的计算公式如下
(1). 按蛋白浓度计算
活性单位定义:在一定温度中,pH8.0 条件下,每毫克蛋白每分钟催化 1nmol NADPH 氧化为 1 个酶活单位。
GR 酶活(nmol/min/mg prot)= [ △A 测定管÷ε÷d×V 反总×109]÷[Cpr×V 样]÷T
= 1072×△A 测定管÷Cpr
(2). 按样本质量计算
活性单位定义:在一定温度中,pH8.0 条件下,每克样本每分钟催化 1nmol NADPH 氧化为 1 个酶活单位。
GR 酶活(nmol/min/g 鲜重)= [ △A 测定管÷ε÷d×V 反总×109] ÷(W×V 样÷V 样总)÷T
= 1072×△A 测定管÷W
(3) 按细胞数量计算
活性单位定义:在一定温度中,pH8.0 条件下,每 104 个细胞每分钟催化 1nmol NADPH 氧化为 1 个酶活单位。
GR 酶活(nmol/min/104 cell)= [ △A 测定管÷ε÷d×V 反总×109] ÷(细胞数量×V 样÷V 样总)÷T
=1072×△A 测定管÷细胞数量
(4)按液体体积计算
活性单位定义:在一定温度中,pH8.0 条件下,每毫升液体每分钟催化 1nmol NADPH 氧化为 1 个酶活单位。
GR 酶活(nmol/min/ml)= [ (△A 测定管-△A 空白管)÷ε÷d×V 反总×109]÷×V 样÷T
=1072×△A 测定管
ε:NADPH 摩尔消光系数 6.22×103L/mol/cm;d:96 孔板光径,0.5 cm;V 反总:反应体系总体积,200μl=2×10-4 L;106:1 mol=1×106μmol; Cpr:上清液蛋白浓度(mg/ml);W :样品质量;V 样:加入反应体系中上清液体积,20μl =2×10-2 ml;V 样总:提取液体积,1 ml;V 样总:提取液体积,1 ml;T:反应时间,3 min。
(1) 样品处理等过程均需要在冰上进行,且须在当日测定酶活力,匀浆液避免反复冻融;
(2) 试剂二和试剂三须现配现用,配制完后,置于冰上,未使用完的 4℃保存,三天内使用完。
(3) 测定前须先用 1~2 个样做预实验,哺乳动物组织一般须用试剂一稀释 2~5 倍。
(4) 细胞中 GR 活性测定时,细胞数目须在 300 万-500 万之间,细胞中 GR 的提取时可加试剂一后研磨或超声波处理,不能用细胞裂解液处理细胞。
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