丙酮酸脱氢酶(Pyruvate dehydrogenase,PDH)试剂盒说明书
分光光度法 50 管/48 样
PDH(EC 1.2.4.1)广泛存在于动物、植物、微生物和培养细胞中,是丙酮酸脱氢酶复合体(PDHC)催化丙酮酸氧化脱羧的限速酶,催化丙酮酸脱梭生成羟yi基-TPP,把糖酵解和三羧酸循环连接起来。
PDH 催化丙酮酸脱氢,同时还原 2,6-二氯酚靛酚(2,6-DCPIP),从而导致 600nm 光吸收的减少。
产品名称 | BK6003-50T/48S | Storage |
试剂一:液体 | 50ml | -20℃ |
试剂二:液体 | 10ml | -20℃ |
试剂三:液体 | 1ml | -20℃ |
试剂四:液体 | 50ml | 4℃ |
试剂五:粉剂 | 1 支 | 4℃ |
试剂六:粉剂 | 1 支 | 4℃ |
试剂七:粉剂 | 1 支 | 4℃ |
试剂八:粉剂 | 1 支 | 4℃ |
说明书 | 一份 |
工作液的配制:临用前把试剂五、试剂六、试剂七和试剂八转移到试剂四中混合溶解待用;用不完的试剂分装后-20℃保存,禁止反复冻融。
具体产品的参数以收到产品说明书的参数为准
可见分光光度计、水浴锅、台式离心机、可调式移液器、1 ml 玻璃比色皿、研钵、冰和蒸馏水。
组织、细菌或细胞中胞浆蛋白与线粒体蛋白的分离:
1、 称取约 0.1g 组织或收集 500 万细菌或细胞,加入 1ml 试剂一和 10μl 试剂三,用冰浴匀浆器或研钵匀浆。
2、 将匀浆 600g,4℃离心 5min。
3、 弃沉淀,将上清液移至另一离心管中,11000g,4℃离心 10min。
4、 上清液即胞浆提取物,可用于测定从线粒体泄漏的 PDH(此步可选做)。
5、 在步骤④的沉淀中加入 200μl 试剂二和 2μl 试剂三,超声波破碎(冰浴,功率 20%或 200W,超声 3 秒,间隔 10 秒,重复 30 次),用于线粒体 PDH 活性测定。
1、分光光度计预热 30min 以上,调节波长至 605nm 处,蒸馏水调零。
2、工作液于 37℃(哺乳动物)或 25℃(其它物种)中孵育 5min。
3、在 1ml 玻璃比色皿中加入 50μl 样本和 900μl 工作液,混匀,立即记录 605nm 处初始吸光值 A1 和 1min后的吸光值A2,计算ΔA=A1-A2。
(1) 按样本蛋白浓度计算
单位的定义:每mg 组织蛋白每分钟消耗 1 nmol 2,6-二氯酚靛酚定义为一个酶活性单位。 PDH 活性(nmol/min /mg prot)=[ΔA×V 反总÷(ε×d)×109]÷(V 样×Cpr) ÷T=905×ΔA÷Cpr
(2) 按样本鲜重计算
单位的定义:每g 组织每分钟消耗 1 nmol 2,6-二氯酚靛酚定义为一个酶活性单位。
PDH 活性(nmol/min/g 鲜重)=[ΔA×V 反总÷(ε×d)×109]÷(W× V 样÷V 样总) ÷T=182.8×ΔA÷W
(3) 按细菌或细胞密度计算
单位的定义:每 1 万个细菌或细胞每分钟消耗 1 nmol 2,6-二氯酚靛酚定义为一个酶活性单位。 PDH 活性(nmol/min /104 cell)=[ΔA×V 反总÷(ε×d)×109]÷(500×V 样÷V 样总)÷T=0.366×ΔA
V 反总:反应体系总体积,9.5×10-4 L;ε:2,6-二氯吲哚酚摩尔消光系数,2.1×104 L / mol /cm;d:比色皿光径,1cm;V 样:加入样本体积,0.05 ml;
V 样总:加入提取液体积,0.202 ml;T:反应时间,1 min; Cpr:样本蛋白质浓度,mg/ml;W:样本质量,g;500:细菌或细胞总数,500 万。
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