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单胺氧化酶试剂盒 其他系列-常备现货
简要描述:

MAO(EC1.4.3.4) 主要存在于脊椎动物的各种器官,特别是分泌腺、脑、肝脏,在无脊椎动物、豆类的芽等植物中也存在催化单胺类物质代谢,含量较低,具有重要的生理功能,其活性能反映肝纤维化的程度。
单胺氧化酶试剂盒 其他系列-常备现货

  • 产品型号:BP6019
  • 厂商性质:经销商
  • 更新时间:2025-05-04
  • 访  问  量:89
详情介绍


单胺氧化酶(Monoamine OxidaseMAO试剂盒说明书

分光光度法 50 /48 

正式测定前务必取 2-3 个预期差异较大的样本做预测定测定意义:

MAO(EC1.4.3.4) 主要存在于脊椎动物的各种器官,特别是分泌腺、脑、肝脏,在无脊椎动物、豆类的芽等植物中也存在催化单胺类物质代谢,含量较低,具有重要的生理功能,其活性能反映肝纤维化的程度。此外,MAO 活性异常导致细胞内单胺类神经递质运转现紊乱,从而引发多种病症。

测定原理:

MAO 催化单胺类底物脱氨生成相应的醛,进一步氧化成酸;底物在 360nm 处有特征吸收峰,测定360nm 光吸收下降的速率,计算MAO 活性。


单胺氧化酶试剂盒   其他系列-常备现货

试剂组成和配制:

产品名称

BP6019-50T/48S

Storage

提取液:液体

50ml

4℃

提取液:液体

50ml

4℃

试剂一:液体

100ml

4℃

试剂二:液体

5ml

4℃避光

说明书

一份

需自备仪器和用品:

天平、低温离心机、可见分光光度计、1 ml 玻璃比色皿、蒸馏水。


具体产品的参数以收到产品说明书的参数为准


粗酶液取:

1、组织:

按照组织质量(g):提取液体积(ml) 15~10 的比例(建议称取约 0.1g 组织,加入 1ml 提取液一)进行冰浴匀浆,10000g4℃,离心 10min,弃沉淀;把上清转移到另一预冷的离心管,10000g4℃,离 30min,弃上清;加入 1.0 ml 预冷的提取液二,震荡混匀,16000g4℃,离心 40min,弃上清;沉淀加入预冷的 1.0 ml 试剂一,震荡混匀,即粗酶液(可用于可溶性蛋白浓度测定)取上清置于冰上待测。

2、细菌、真菌:

按照细胞数量(104 个):提取液体积(ml 500~10001 的比例(建议 500 万细胞加入 1ml 提取液),冰浴超声波破碎细胞(功率 300w,超声 3 秒,间隔 7 秒,总时间 3min;然后 10000g4℃,离 10min,弃沉淀;把上清转移到另一预冷的离心管,10000g4℃,离心 30min,弃上清;加入 1.0 ml预冷的提取液二,震荡混匀,16000g4℃,离心 40min,弃上清;沉淀加入预冷的 1.0 ml 试剂一,震荡混匀,即粗酶液(可用于可溶性蛋白浓度测定),取上清置于冰上待测。

3、血清:直接测定。

测定步骤:

试剂名称(µl)

空白管

测定管

酶液µl


100

试剂一µl

900

800

试剂二µl

100

100

混匀,1 ml 玻璃比色皿,对照管调零,测定 360nm 处吸光值A1,然后 37℃水浴 60min,测定 360nm处吸光值A2A= A1- A2。注意:空白管只需测定一次。

MAO 活性计算公式

1、按蛋白含量计算

酶活定义:37℃pH7.6 时,每毫克蛋白质 1min 内转化 1nmol 底物的酶量为一个酶活单位。


DAO 活性(nmol/min / mg prot= 2、按样本质量计算


e´ d ×V 反总÷V ×Cpr÷T= 114×ΔA÷Cpr


酶活定义:37℃pH7.6 时,每克样品 1min 内转化 1nmol 底物的酶量为一个酶活单位。



DAO 活性(nmol/min / g 鲜重)=e´ d ×V 反总÷V ÷V 样总×W÷T = 114×ΔA÷ W 3、按照细胞数量计算

酶活定义:37℃pH7.6 时,每 104 个细胞 1min 内转化 1nmol 底物的酶量为一个酶活单位。


DAO 活性(nmol/min / 104 cell=

= 114×ΔA÷细胞数量 4、按照液体体积计算


e´ d ×V 反总÷V ÷V 样总×细胞数量÷T


酶活定义:37℃pH7.6 时,每升血清 1min 内转化 1nmol 底物的酶量为一个酶活单位。




DAO 活性(nmol/min /L=e´ d ×V 反总÷V =114000×ΔA

ε:底物摩尔消光系数,1.46 L/mol /cmd:比色皿光径,1cmV 反总:反应总体积,1mlV 样:反应中样本体积,0.1mlV 样总:加入提取液体积,1mlCpr:样本蛋白浓度,mg/mlT:反应时间,60min W:样本质量,g


注意事项:

1、吸光度变化应该控制在 0.01~0.8 之间。否则加大样品量或稀释样品,注意计算公式中参与计算的稀释倍数要相应改变。

2、样品蛋白质含量需要另外测定。

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