糖原染色是病理学中常规的染色方法之一，McManus在1946年最先使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该染色液不仅能够显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质，以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。 
糖原D-PAS染色试剂盒(淀粉mei消化法) 特殊

诺博莱德  糖原D-PAS染色试剂盒(淀粉mei消化法)，Periodic Acid Schiff Diastase(D-PAS) Stain Kit

糖原D-PAS染色试剂盒(淀粉mei消化法) 特殊

产品货号：G9060

产品名称：糖原D-PAS染色试剂盒(淀粉mei消化法)，Periodic Acid Schiff Diastase(D-PAS) Stain Kit

产品规格：5*50ml / 5*100ml

产品简介：

中文名称：糖原D-PAS染色试剂盒(淀粉mei消化法)

英文名称：Periodic Acid Schiff Diastase(D-PAS) Stain Kit

规格：5*50ml / 5*100ml

储存条件：2-8℃，避光保存，有效期6个月。

具体产品的参数以收到产品说明书的参数为准

NobleRyder G9060 糖原D-PAS染色试剂盒(淀粉mei消化法)，Periodic Acid Schiff Diastase(D-PAS) Stain Kit产品介绍

糖原染色是病理学中常规的染色方法之一，McManus在1946年最先使用高碘酸-雪夫技术显示黏蛋白，该法常用来显示糖原和其他多糖，该染色液不仅能够显示糖原，还能显示中性黏液性物质和某些酸性物质，以及软骨、垂体、霉菌、真菌、色素、淀粉样物质、基底膜等。 
    过碘酸（又称高碘酸）是一种强氧化剂，它能氧化糖类及有关物质中的1，2-乙二醇基，使之变为二醛，醛与Schiff试剂能结合成一种品红化合物，产生紫红色。由于高碘酸还可氧化细胞内其他物质，使用时应注意选择好高碘酸浓度和氧化时间，使氧化控制在即能把乙二醇基氧化成醛基，又不至于过氧化，这是很关键的步骤。 
    PAS技术是wei一可检测不同种类的黏液物质（如糖原、黏蛋白和糖蛋白）的方法，但PAS技术却不能区别黏蛋白和糖原。若要准确鉴别黏液物质（如黏蛋白和糖原），需加入糖原消化步骤。大多数情况下可用α-淀粉mei或麦芽淀粉mei来催化糖原的糖苷键水解。形成水溶性的双糖-麦芽糖，在应用PAS技术之前将糖原从组织切片上除去。人类的唾液被认为是消化糖原的一种有效手段，但是出于安全以及缺乏标准唾液的考虑，不主张应用唾液。
    糖原D-PAS染色液的特点在于糖原PAS染色之前经淀fen酶处理，糖原消化时需要两张相同的切片，脱蜡后一张切片用含有淀fen酶的适当缓冲液处理，另一张仅用缓冲液处理。然后两张切片均用PAS法染色，消化后染色消失表明存在糖原。

操作步骤：（仅供参考）

1. 两张相同切片，二甲苯脱蜡，梯度乙醇入水。

2. 一张切片滴加淀粉mei溶液室温处理 20-60min 作阴性对照。另一张浸水保持湿润即可，无需额外处理。

3. 流水冲洗两张切片各 2-5min。

4. 滴加氧化剂，室温放置 5-8min，一般不宜超过 10min。蒸馏水浸洗 2 次，每次 30s。

5. 滴加 Schiff 染色液，置于室温阴暗处，浸染 10-20min。自来水冲洗 10min。

6. 滴加 Mayer 苏mu素染色液中，染细胞核 1-2min。

7. (可选)滴加酸性分化液分化 2-5s。

8. 自来水冲洗 10-15min 使其返蓝。

9. 常规乙醇脱水，二甲苯透明，中性树胶封固。

注意事项：

1. 切片脱蜡应尽量干净，否则影响染色效果。

2. 需使用一张阳性对照片验证酶的活性。

3. 氧化剂氧化时间不宜过久，氧化时的温度以 18-22℃最佳。

4. 试剂 A、试剂 B、试剂 C 应置于 4℃密闭保存，使用时避免接触过多的阳光和空气。使用前，最好提 前取出恢复到室温，避光暗处使用。

5. 酸性分化液应经常更换新液，其分化时间应该依据切片厚薄、组织的类别和酸性分化液的新旧而定， 另外分化后自来水冲洗时间应该足够。

6. 在氧化剂和 Schiff 染色液中作用时间非常重要，该依据切片厚薄、组织的类别等决定。

7. 冷冻切片染色时间尽量要短。

8. 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。

糖原D-PAS染色试剂盒(淀粉mei消化法) 特殊

产品订购信息：

NobleRyder G9060 糖原D-PAS染色试剂盒(淀粉mei消化法)，Periodic Acid Schiff Diastase(D-PAS) Stain Kit 5*50ml / 5*100ml