诺博莱德 NHS磁珠 Magrose-NHS Magrose-NHS magnetic beads
NHS磁珠 辅助试剂-常备现货
产品货号:M0239
产品名称:NHS磁珠 Magrose-NHS Magrose-NHS magnetic beads
英文名称:Magrose-NHS magnetic beads
产品规格:1ml/5ml
产品简介:
说明:20%(v/v)
具体产品的参数以收到产品说明书的参数为准
NobleRyderM0239 NHS磁珠 Magrose-NHS Magrose-NHS magnetic beads表面为NHS 基团修饰,能够与带有伯胺基团的蛋白和其他分子形成稳定的肽键,用于亲和纯化抗体、抗原和其他生物分子。与传统的羧基、氨基磁珠相比,表面含 NHS 基团的磁珠无需事先采用EDC/NHS或戊二醛进行活化,只需简单地将含伯氨基的生物配体溶解在试剂盒自带的Coupling Buffer 中,室温下将蛋白与NHS 磁珠混合1~2h 便可将生物配体共价偶联到磁珠上,
具有操作简单、偶联条件温和、生物配体偶联快速高效等优点。磁珠偶联过程必需在不含任何氨基的缓冲溶剂中进行。人工操作时,使用磁性分离架实现磁珠与溶剂分离。也可采用自动化设备操作,自动化操作适合用于多样品的筛选。
蛋白偶联操作流程及优化点
1.蛋白溶液的配制
2.磁珠的洗涤
3.蛋白偶联:(优化)
(1) Coupling Buffer 的种类。首先通过实验确定最合适的CouplingBuffer
(2) 确定合适的CouplingBuffer 后,再通过实验优化蛋白溶液的浓度
4.封闭
5.磁珠保存
6.注意事项:
(1) 其中磁珠洗涤要严格按照说明书采用冷却的WashingBufferA快速洗涤,以防磁珠在洗涤过程中NHS基团水解;
(2) 蛋白偶联过程中, 首先要通过实验确定合适的CouplingBuffer(主要包括CouplingBufferA、Coupling Buffer B、50 mM 硼酸溶液,pH8.5、100mM 磷酸缓冲液,100mMNaCl,pH7.4 这四种);
(3) 确定合适的 CouplingBuffer 后,再以此 CouplingBuffer 为基础,确定合适的偶联蛋白浓度,因为蛋白浓度越高,偶联到磁珠上的蛋白的量会越大(这是由于NHS基团跟蛋白偶联和NHS 基团本身水解是一对竞争反应)。当然此处要综合考虑使用性能和成本,有些客户偶联少量的蛋白便可满足使用需求,这时采用低浓度的蛋白便可,这样可以降低成本。
(4) 封闭这一步可以采用试剂盒中自带的3M乙醇胺,也可使用Tris 缓冲液(100mMTris-HCl,150 mMNaCl, pH 8.0),封闭时间不得低于2h,如果化学封闭后背景仍然很高,还可以额外加一步 BSA 封闭。
蛋白偶联操作步骤
以下操作过程以取磁珠样品500μL,采用1.5mLEP 管为例介绍。用户可根据自身需求按比例调整:
1. 蛋白溶液配制:
取适量待偶联蛋白用 CouplingBuffer 溶解,配成浓度为≥3.0mg/mL 的蛋白溶液。已经保存于buffer 中的蛋白,需要通过透析或者脱盐的方法che底除去原有 buffer 里含伯胺基的物质,然后再用Coupling Buffer 配成浓度为≥3.0 mg/mL 的蛋白溶液,将配制好的蛋白溶液于 4ºC 保存备用。
注:(1)为了达到更好的性能,蛋白浓度≥3.0mg/mL,这样偶联效率会更高,此处需综合考虑成本和
使用要求;
(2)蛋白溶液中不能含有带伯氨基的成分,比如 Tris,甘an酸,明胶,BSA 等;
2. 磁珠清洗
1) 取 500μL20%的磁珠悬浮液于 1.5mLEP 管中。
注:磁珠取样前要反复颠倒、使用涡旋振荡器使其混合均匀,以保证实验的同一性,每取一次样需要重新混匀。
2) 将EP 管置于磁性分离架内,富集磁珠,去除上清液。
3) 加 1mL2~8ºC 的WashingBufferA于离心管中,涡旋 15s,使磁珠混合均匀。
4) 将EP 管置于磁性分离架内,富集磁珠,去除上清液。
3. 蛋白质固定
1) 加 200μL 蛋白溶液于EP 管中,涡旋 30s,使其混合均匀。
注:磁珠洗涤后要立即加入蛋白溶液。
2) 将EP 管涡旋 15s,置于垂直混合仪上,室温混合 2~4h。如果垂直混合不均匀,则反应前 30min,每隔 5min 取下EP 管涡旋 15s。此后,每隔 15min,取下EP 管涡旋 15s。
注:如有需要可以在 4ºC 反应过夜。
3) 采用磁性分离架富集磁珠,保存流穿液。
4. 磁珠封闭
1) 加 1mLBlocking Buffer 于 EP 管中,涡旋 30s,将EP 管置于磁性分离架内,富集磁珠,弃上清液。
注:Blocking Buffer除了试剂盒中提供的 3M 乙醇胺外,也可以使用 100mMTris-HCl,150mM NaCl, pH 8.0 等其它封端试剂。
2) 重复“步骤4-1"四次。
3) 加 1mLBlockingBuffer于EP 管中,涡旋 30s,将EP 管置于垂直混合仪中室温反应 2h。
4) 将EP 管置于磁性分离架内,富集磁珠,弃上清液。
5) 加 1mL 超纯水于EP 管中,充分混合,用磁力架富集磁珠,弃上清液。
5. 保存
1) 加 1mLStorageBuffer(比如含 0.05%叠氮化na的PBS 缓冲液,或者客户根据自己实际需求选择合适的保存溶液 )于 EP 管中,充分混合,用磁力架富集磁珠,弃上清液。重复该操作 2 次。
2) 加入 1mLStorageBuffer 于EP 管中,充分混合,4ºC 保存备用。
注:最终偶联蛋白的磁珠浓度为 10%(v/v)。
注意事项
1. 磁珠对水分敏感。为了保证产品质量,在取样之后需立即盖上瓶盖,并用封口膜密封,于4℃保存。
2. 禁止将磁珠干燥或冷冻。干燥和冷冻操作可能导致磁珠的聚集从而丧失结合活性。
3. 可通过直接法(BCA )检测偶联到磁珠表面的蛋白含量。使用280nm附近的波长来测定蛋白含量是不可取的,因为NHS 基团在280nm波长附近有很强的吸收,会严重干扰检测结果。蛋白稳定剂(如 BSA,gelatin)会抑制抗体与磁珠的结合,因此在磁珠偶联抗体过程中,需要确保抗体保存体系中不存在含伯氨基的蛋白稳定剂。
4. 缓冲液中含有带伯胺的物质会抑制蛋白质偶联到磁珠表面,去除伯胺物质可采用透析和脱盐的方法。
5. NHS 基团易水解,故在用 WashingBufferA 洗涤时,一定要参照说明书进行。
6. 蛋白溶液要预先配制好,WashingBufferA 洗涤完毕后,要立即加入蛋白溶液进行偶联反应。
7. 蛋白质和磁珠的偶联效率因蛋白质种类和性质差异而不同。一般而言,蛋白质浓度为≥3.0mg/mL 时利于蛋白质偶联;然而,对于不同的蛋白其浓度需要优化。
NHS磁珠 辅助试剂-常备现货
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